酵母单杂交 (Y1H) 是一种研究蛋白质与 DNA 相互作用的经典分子生物学技术,基于转录因子的结构特性,通过报告基因表达检测实现蛋白质 - DNA 互作的高通量分析,广泛应用于基因调控网络解析和转录因子鉴定。
酵母单杂交技术的核心理论基础是转录因子的模块化结构特性:
- 转录因子通常由两个独立功能域组成:
- DNA 结合域 (BD):负责识别并结合特定 DNA 序列
- 转录激活域 (AD):负责激活下游基因转录
- 关键特性:这两个结构域即使物理分离,各自仍保持独立功能
工作机制:
- 将目标 DNA 序列 (如基因启动子、顺式作用元件) 克隆到含报告基因的载体上,构建 "诱饵"
- 将待测蛋白质 (通常是转录因子) 与 GAL4 等转录因子的 AD 融合,构建 "猎物"
- 当两者共转化酵母细胞后:
- 若蛋白质能与目标 DNA 结合,AD 会被招募到报告基因附近
- AD 激活 RNA 聚合酶,启动报告基因表达
- 通过报告基因活性检测 (如生长、荧光、抗性) 判断互作是否存在
- 诱饵载体:目标 DNA 序列 + 最小启动子 + 报告基因
- 猎物载体:待测蛋白基因 + AD (如 GAL4-AD)+ 筛选标记
- 选择合适菌株 (如 Y1HGold、Y187)
- 制备感受态细胞 (OD₆₀₀=0.4~0.6)
- 共转化诱饵与猎物载体
- 选择性培养基 (如 SD/-Leu/-Trp) 筛选转化子
- 营养缺陷筛选:报告基因为营养代谢相关基因 (如 HIS3),在缺乏相应营养的培养基上生长表明互作成功
- 显色 / 荧光检测:报告基因为酶 (如 β- 半乳糖苷酶) 或荧光蛋白 (如 GFP),通过颜色变化或荧光信号判断
- 初筛→复筛→回转验证→点板验证 (排除假阳性)
- 测序确认阳性克隆的 DNA 序列
- 验证已知互作:确认转录因子与特定 DNA 元件的结合
- 筛选新转录因子:从 cDNA 文库中钓取能与目标 DNA 结合的蛋白质
- 定位转录因子的 DNA 结合位点
- 鉴定启动子区域的顺式作用元件
- 绘制基因调控层级图谱
- 分析转录因子的结构 - 功能关系
- 探索疾病相关基因的调控机制
- 药物靶点筛选 (针对转录因子 - DNA 互作)
主流系统对比:
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Y1HGold-pAbAi 系统:
- 报告基因:AUR1-C (抗 AbA 抗生素)
- 优势:筛选强度可调,适合高严谨度筛选
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Y187-pHis2 系统:
- 报告基因:HIS3 (组氨酸合成酶)
- 优势:通过组氨酸缺陷培养基筛选,操作简便
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EGY48-pLacZi 系统:
- 报告基因:LacZ (β- 半乳糖苷酶)
- 优势:通过 X-gal 显色直观判断,适合可视化分析
酵母单杂交技术通过巧妙利用转录因子的结构特性,将蛋白质 - DNA 互作转化为可量化的报告基因表达,为基因调控网络解析提供了高效工具。尽管存在假阳性等挑战,但其操作简便、高通量和接近生理条件的优势使其成为分子生物学实验室的标准技术,在功能基因组学、疾病机制研究和药物开发领域持续发挥关键作用。